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簡(jiǎn)化CRISPR基因編輯的干細(xì)胞的工作流程,提高單克隆效率

更新時(shí)間:2023-11-24      點(diǎn)擊次數(shù):1920
  人誘導(dǎo)多能干細(xì)胞iPSC被廣泛用于疾病建模、藥物開(kāi)發(fā)和疾病的細(xì)胞治療,隨著基因編輯技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展,對(duì)疾病誘導(dǎo)多能干細(xì)胞進(jìn)行基因編輯,校正致病基因的突變并用于細(xì)胞治療正成為轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)和再生醫(yī)學(xué)研究的熱點(diǎn)。
 
  CRISPR介導(dǎo)的基因編輯為研究人員提供了一種更快、更有效的方法來(lái)編輯細(xì)胞中感興趣的關(guān)鍵基因。雖然比傳統(tǒng)方法更有效,但基因組編輯過(guò)程通常會(huì)損害細(xì)胞活力,因此從編輯后的單細(xì)胞生長(zhǎng)成到單克隆細(xì)胞團(tuán)是一個(gè)困難的過(guò)程。CRISPR工作流程的一個(gè)主要瓶頸是單細(xì)胞克隆。細(xì)胞轉(zhuǎn)染后,產(chǎn)生的細(xì)胞群是異質(zhì)的,具有不同程度的編輯。該群體必須從未轉(zhuǎn)染的細(xì)胞中富集并克隆以創(chuàng)建統(tǒng)一的單克隆細(xì)胞系,以便進(jìn)一步表征以確保進(jìn)行正確的基因編輯。此外,必須保證基因變化的安全性和可追溯性,特別是在使用轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的醫(yī)療應(yīng)用中。這是歐洲藥品管理局 (EMA) 和食品藥品監(jiān)督管理局 (FDA) 所要求的。
 
  傳統(tǒng)的分選方法如有限稀釋法耗時(shí)耗力、效率低下;FACS分選的細(xì)胞容易受到鞘液壓力的影響而受損,導(dǎo)致單克隆率低。同時(shí),這兩種方法都無(wú)法提供單細(xì)胞來(lái)源的證明,無(wú)法滿足監(jiān)管部門(mén)的要求。Cytena公司的單細(xì)胞打印機(jī)以噴墨式打印技術(shù)溫和而高效的分選單細(xì)胞,簡(jiǎn)化了基因編輯工作流程,極大的提高了單克隆有效率。
 
  下面小編將闡述Cytena的single cell printer分別如何提高iPSC的單克隆效率,如何簡(jiǎn)化基因編輯的MSC的工作流程。
 
  CRISPR基因編輯與人多能干細(xì)胞(hPSC)
 
  iPSC是什么?
 
  2006年,日本科學(xué)家Yamanaka及其研究小組利用逆轉(zhuǎn)錄病毒作為載體,向鼠成纖維細(xì)胞中導(dǎo)入4個(gè)轉(zhuǎn)錄因子,獲得在形態(tài)、基因和蛋白表達(dá)、細(xì)胞倍增能力、類(lèi)胚體和畸形瘤生成能力、分化能力等都與胚胎干細(xì)胞極為相似的細(xì)胞,后命名為誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(induced Pluripotent Stem Cell, iPSC)。次年,該研究小組又成功將人體細(xì)胞重編程為iPSC,允許自我更新和分化成人體幾乎所有的細(xì)胞類(lèi)型。
 
  iPSC細(xì)胞研究改變了基礎(chǔ)研究的方向和趨勢(shì),Yamanaka也因“將成熟細(xì)胞重新編程,轉(zhuǎn)化為可以分化為多種細(xì)胞類(lèi)型的誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSC)方面的杰出貢獻(xiàn)”成為2012年諾貝爾生理或醫(yī)學(xué)獎(jiǎng)共同得主。
 
  iPSC應(yīng)用領(lǐng)域及研究熱點(diǎn)
 
  iPSC的一個(gè)關(guān)鍵優(yōu)勢(shì)是它們從人類(lèi)的成體細(xì)胞產(chǎn)生,避免了人類(lèi)胚胎干細(xì)胞的倫理爭(zhēng)議,在藥物發(fā)現(xiàn)、疾病建模、細(xì)胞治療中具有廣泛的應(yīng)用。為了進(jìn)一步發(fā)揮人iPSC的應(yīng)用潛能,通過(guò)CRISPR/Cas9基因編輯的方法,將疾病發(fā)生的突變引入iPSC,或通過(guò)iPSC修復(fù)疾病模型中的突變,再分化成不同的細(xì)胞進(jìn)行研究或治療,是目前iPSC的研究熱點(diǎn)1。

圖1:iPSC的研究熱點(diǎn)

 
  Cytena單細(xì)胞打印機(jī)在CRISPR 基因編輯的hPSC單細(xì)胞分選中的應(yīng)用
 
  hPSC對(duì)培養(yǎng)環(huán)境的變化十分敏感,如pH值、滲透壓、營(yíng)養(yǎng)供應(yīng)、機(jī)械應(yīng)力/剪切力等。在傳統(tǒng)的培養(yǎng)條件下,hPSC通常在涂有各種細(xì)胞外基質(zhì)表面上密集生長(zhǎng)。在對(duì)hPSC基因組編輯過(guò)程中,最大的挑戰(zhàn)之一是獲得陽(yáng)性單克隆細(xì)胞。單個(gè)hPSC的生長(zhǎng)過(guò)程中,減少了細(xì)胞和細(xì)胞之間、細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)的接觸,容易誘發(fā)細(xì)胞失巢凋亡,導(dǎo)致單細(xì)胞存活率顯著下降。一方面,抑制細(xì)胞失巢凋亡的產(chǎn)生,會(huì)改善單細(xì)胞存活率;另一方面,溫和的自動(dòng)化分選系統(tǒng)可以進(jìn)一步優(yōu)化陽(yáng)性單克隆細(xì)胞的篩選平臺(tái)。
 
  德國(guó)學(xué)者在Curr Protoc Stem Cell Biol上發(fā)表文章,分享使用Cytena單細(xì)胞打印機(jī)分選基因編輯后hPSC單細(xì)胞的流程,最終平均每個(gè)96孔板獲得30-50個(gè)單克隆hPSC2。

圖2:Cytena單細(xì)胞打印機(jī)篩選單克隆hPSC流程

 
  21年5月,Nature Methods報(bào)道能顯著提高h(yuǎn)PSC在單細(xì)胞克隆過(guò)程中存活率的四組分配方CEPT。
 
  相比于流式分選,Cytena單細(xì)胞打印機(jī)以更溫和的篩選技術(shù)極大提高了單細(xì)胞存活率;并利用單細(xì)胞打印機(jī)驗(yàn)證CEPT能夠提高不同來(lái)源hPSC細(xì)胞株在轉(zhuǎn)染前后的單克隆細(xì)胞的存活率,且沒(méi)有引起遺傳異常3。

圖3:Cytena單細(xì)胞打印機(jī)驗(yàn)證CEPT提高單克隆hPSC活率

 
  •  流式細(xì)胞儀和Cytena分選hPSC細(xì)胞比較。Cytena分選hPSC細(xì)胞過(guò)程中捕捉噴嘴圖片證實(shí)單細(xì)胞來(lái)源(圖3d);比較小分子Y-27632與CEPT處理后hPSC的單克隆有效率,可以發(fā)現(xiàn)CEPT處理后克隆有效率更高(圖3b, 3c);在相同小分子處理下,Cytena分選設(shè)備單克隆有效率(圖3c, 3d)比流式分選(圖3a, 3b)高出~20%。
 
  •  后續(xù)的實(shí)驗(yàn)摸索均使用Cytena分選設(shè)備,證實(shí)CEPT可以明顯提高h(yuǎn)PSC單細(xì)胞克隆率(圖3e, 3f);與 VN 相比,涂有LN521的并含有 StemFlex 培養(yǎng)基的 96 孔板中的hPSC單細(xì)胞生存得更好、遷移能力更強(qiáng)(圖3e, 3f, 3g)。
 
  •  隨機(jī)選取CEPT處理后的單克隆,建系傳4代培養(yǎng)后,細(xì)胞核型檢測(cè)均正常,表明CEPT沒(méi)有引起遺傳異常(圖3h)。
 
  •  同時(shí),使用CRISPR/Cas9進(jìn)行基因組編輯CEPT處理后的hPSC,發(fā)現(xiàn)其改善了電穿孔時(shí)的細(xì)胞存活率(圖3i-3l)。
 
  Cytena單細(xì)胞打印機(jī)簡(jiǎn)化生成CRISPR編輯的MSC克隆的工作流程
 
  除了在hPSC的應(yīng)用外,Cytena單細(xì)胞打印機(jī)在再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中被用于簡(jiǎn)化生成 CRISPR 編輯的間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)克隆的工作流程。

圖4:RANKL-KO MSCs工作流程

 
  文獻(xiàn)4向我們展示了一種高效、高通量的工作流程(圖4),該工作流程采用 f.sight™單細(xì)胞打印機(jī),通過(guò)GFP報(bào)告基因,用于選擇和克隆 CRISPR/Cas9 編輯以敲除RANKL蛋白的間充質(zhì)干細(xì)胞 (MSC),以進(jìn)一步增強(qiáng)MSCs在再生醫(yī)學(xué)中的治療能力。

圖5:Cytena單細(xì)胞打印機(jī)利用GFP簡(jiǎn)化篩選陽(yáng)性單克隆MSCs流程

 
  f.sightTM的高靈敏度能夠檢測(cè)到編輯后的MSCs的低熒光信號(hào)并富集到編輯成功的帶綠色熒光信號(hào)的細(xì)胞(圖5A),f.sightTM的單細(xì)胞分離效率高達(dá)93.9±2.7%(n=451)(圖5A)。轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的間充質(zhì)干細(xì)胞(31.3±8%)和未轉(zhuǎn)染的間充質(zhì)干細(xì)胞(39.6±15.6%)在成克隆率上差異較小,基因編輯過(guò)程通常會(huì)損害細(xì)胞活力,這也表明f.sight單細(xì)胞分選過(guò)程柔和,因此產(chǎn)生的系統(tǒng)偏差較小(圖5B)。

圖6:RANKL-KO MSCs增強(qiáng)成骨分化能力

 
  CRISPR/Cas9編輯過(guò)的敲除RANKL蛋白的間充質(zhì)干細(xì)胞與野生型MSC展現(xiàn)出類(lèi)似的形態(tài)學(xué)。在第21天,將細(xì)胞固定并用茜素紅染料染色,以觀察通常在骨細(xì)胞中表現(xiàn)出的鈣化。鈣化的存在表明RANKL敲除的MSCs仍然保持其成骨特性分化的能力。
 
  最終,獲得182個(gè)單克隆細(xì)胞,選取17個(gè)做進(jìn)一步驗(yàn)證,獲得2個(gè)成功敲除RANKL基因并表現(xiàn)出增強(qiáng)成骨分化能力的克隆。
 
 
  參考文獻(xiàn):
 
 
 
  1.De Masi C, Spitalieri P et al. Application of CRISPR/Cas9 to human-induced pluripotent stem cells: from gene editing to drug discovery. Hum Genomics. 2020 Jun 26;14(1):25. doi: 10.1186/s40246-020-00276-2.
 
 
 
  2.Chen Y , Carlos A. T , Chen L,et al. A Versatile Polypharmacology Platform Promotes Cytoprotection and Viability of Human Pluripotent and Differentiated Cells. Nat Methods. 18(5), 528–541(2021)
 
 
 
  3.Vallone et al. Methods for Automated Single Cell Isolation and Sub-Cloning of Human Pluripotent Stem Cells, Current Protocols in Stem Cell Biology e123, Volume 55(2020)
 
 
  4.Gross, Tobias, et al. Characterization of CRISPR/Cas9 RANKL knockout mesenchymal stem cell clones based on single-cell printing technology and Emulsion Coupling assay as a low-cellularity workflow for single-cell cloning. Plos one 16 3 e0238330 2021.
 
  關(guān)于Cytena公司

 

 
  Cytena公司潛心研究單細(xì)胞打印機(jī)技術(shù)多年,不斷升級(jí)設(shè)備功能,以一貫溫和的分選原理、更加快速的分選效率、更加簡(jiǎn)易的操作步驟,助力抗體、細(xì)胞治療、基因治療、干細(xì)胞等研究領(lǐng)域的客戶快速搭建單細(xì)胞篩選平臺(tái)。艾貝泰生物科技有限公司作為Cytena的單細(xì)胞打印機(jī)總代理商,為您提供優(yōu)*的售前售后服務(wù)。

 

 

 
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